Tincion de Pas Kit.

USD 57,91 +IVA

Kit Contiene:  2 fco. x 100 ml.

  • Solución A:  Acido Periodico Solución al 1%
  • Solución B:  Reactivo Según Schiff
ENVASE, MARCA:
Env. x 100 Ml./ STANTON ®
Tincion de Pas Kit.

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TINCIÓN DE PAS

Kit de Tinción para microscopia

Uso Previsto:

  • La Tinción de PAS  es un procedimiento aplicable a cortes o secciones de tejidos parafinados, frotis de sangre, improntas de tejidos o extendidos citológicos, para la determinación de glucógeno, mucinas, mucopolisacáridos, hidratos de carbono y linfocitos, mediante una reacción cromática.
  • La aplicación de esta técnica de tinción es parte fundamental de paneles de tinciones histoquímicas tanto dentro del área diagnostica de histopatologías humanas, animales como en el campo de la investigación.
  • Dentro de las patologías más comunes de aplicación podemos nombrar: leucemia linfocítica, patologías hepáticas, renales, musculares y de piel.
  • Mediante la Tinción de PAS también es posible la demostración de microorganismos fúngicos en cortes o secciones de tejidos parafinados.

Principio:

  • El mecanismo de acción del Reactivo según Schiff consiste en una previa oxidación de los glicoles presentes en la  muestra tratada mediante la aplicación del Acido Periódico (Solución A).
  • Luego estos componentes reaccionan con la fucsina básica del Reactivo según Schiff (Solución B), tiñéndolos de un color rojo magenta.
  • Mediante una digestión previa opcional con diastasa (α-amilasa) puede utilizarse para el diagnóstico de enfermedades relacionadas con el almacenamiento de glicógeno.

 Procedencia de las muestras:

  • Tinción de PAS se aplica frecuentemente en cortes histológicos de muestras de tejidos fijados, procesados e incluidos en parafina.
  • Puede emplearse también sobre extendidos citológicos, frotis de sangre o médula ósea o material clínico citológico como sedimentos urinarios, esputos, frotis tomados de punciones aspirativas (Paaf), líquidos de lavados e improntas de tejidos.

Recolección de muestras:

  • Se recomienda que la recolección de muestras se realice de acuerdo con las guías y estándares locales de procedimientos de laboratorios.
  • Todos los derivados sanguíneos o de muestras de tejidos deben considerarse potencialmente infecciosos.
  • Los manuales de procedimientos de histología estándar proporcionan todos los detalles necesarios para la recolección de muestras y el almacenaje de las mismas.

Contenido del Kit:

  • Solución A:  Acido Periodico Solución al 1%
  • Solución B:  Reactivo Según Schiff
  • Ambos reactivos  “listos para usar”

Modo de uso:

Procedimiento para cortes o secciones de tejidos parafinados:

  1. Desparafinar con Xileno o Sustituto del Xileno Bioclear, dos cambios de 15 minutos cada uno.
  2. Hidratar los cortes con sucesivos pasajes por alcoholes (Alcohol Etílico absoluto y Alcohol Etílico 96º) o deshidratantes (Deshidratante 100º / 90º / 80º), con graduación decreciente terminando con un lavado por inmersión en Agua desmineralizada, durante 2 a 3 minutos. (1*)
  3. Oxidar con Solución A durante 10 minutos a temperatura ambiente.
  4. Lavar con Agua desmineralizada, 3 o 4 cambios.
  5. Realizar tinción con Solución B durante 15 minutos a temperatura ambiente.
  6. Lavar en agua corriente común durante 5 minutos.
  7. Lavar con Agua desmineralizada durante 1 minuto.
  8. Contrastar con Hematoxilina de Harris solución o Hematoxilina de Gill (II) solución, durante 30 segundos.
  9. Virar en agua corriente durante 5 minutos.
  10. Deshidratar los cortes con sucesivos pasajes por alcoholes (Alcohol Etílico 96º y Alcohol Etílico absoluto) o deshidratantes (Deshidratante 80º / 90º / 100º), con graduación creciente, durante 2 a 3 minutos. (2*)

Aclarar mediante 2 inmersiones sucesivas en  Xileno p.a. o Sustituto del Xileno, y dejar las muestras aclarando durante al menos 3 minutos.

  1. Montar con Bálsamo de Canadá Sintético.

Resultados:

  • Estructuras PAS Positivas: Magenta
  • Núcleos celulares: Azul

Notas:

(1*) Sucesivos pasajes, refiere a : una inmersión en Deshidratante 100° Uso Histológico o Alcohol Etílico absoluto p.a., una inmersión en Deshidratante 90° Uso Histológico o Alcohol Etílico 96º p.a., una inmersión en Deshidratante 80° Uso Histológico o Alcohol Etílico 96º p.a y una inmersión de al menos 2 minutos en Agua desmineralizada.

(2*) Sucesivos pasajes, refiere a: una inmersión en Deshidratante 80° Uso Histológico o Alcohol Etílico 96º p.a., una inmersión en Deshidratante 90° Uso Histológico o Alcohol Etílico 96º p.a., una inmersión en Deshidratante 100° Uso Histológico o  Alcohol Etílico absoluto p.a.

Procedimiento para frotis de sangre, improntas de tejidos o extendidos citológicos:

  1. Realizar los frotis o extendidos y rociar con fijador en spray Pathofix Fijador Citológico durante 5 minutos.
  2. Lavar con Agua desmineralizada y luego incubar con Solución A durante 10 minutos.
  3. Lavar nuevamente con Agua desmineralizada, 3 o 4 cambios.
  4. Incubar con Solución B durante 15 minutos a temperatura ambiente.
  5. Lavar en agua corriente común durante 5 minutos.
  6. Lavar con Agua desmineralizada durante 1 minuto.
  7. Contrastar con Hematoxilina de Harris Solución o Hematoxilina de Gill (II) Solución durante 30 segundos.
  8. Virar en agua corriente durante 5 minutos.
  9. Deshidratar con alcoholes (Alcohol Etílico 96º y Alcohol Etílico absoluto) o deshidratantes (Deshidratante 80º / 90º / 100º uso histológico) crecientes en graduación, en sucesivos pasajes (*2).
  10. Aclarar mediante 2 inmersiones sucesivas en Xileno p.a. o Sustituto del Xileno Bioclear, dejar las muestras aclarando durante al menos 3 minutos.
  11. Montar con Bálsamo de Canadá Sintético.

Resultados:

  • Estructuras PAS Positivas: Magenta
  • Núcleos celulares: Azul

Notas:

  • (2*) Sucesivos pasajes, refiere a: una inmersión en Deshidratante 80° Uso Histológico o Alcohol Etílico 96º p.a.,
  • una inmersión en Deshidratante 90° Uso Histológico o Alcohol Etílico 96º p.a., una inmersión en
  • Deshidratante 100° Uso Histológico o  Alcohol Etílico absoluto p.a.

Diagnóstico: 

  • El microscopio usado debería corresponder a los requisitos de un laboratorio de diagnóstico médico.
  • Los diagnósticos y evaluaciones las deben realizar solo personas autorizadas y calificadas.
  • Siempre es recomendable el uso de controles de tinción apropiados para descartar resultados erróneos.

Almacenamiento y estabilidad:

  • Almacenar el producto en envase cerrado (sin usar), a temperatura ambiente menor de 25ºC y al abrigo de la luz.
  • Para lograr una óptima estabilidad de los componentes del Kit Tinción de PAS, una vez abiertos los envases, conservar en refrigerador entre 2ºC a 8°C .
  • Mantenga bien cerrados los envases y dentro de la caja contenedora.
  • Utilice el producto hasta la fecha de caducidad indicada en el envase.

Solamente para uso profesional:

  • La aplicación de este tipo de reactivos debe ser realizada por personal especializado.
  • El usuario deberá cumplir las directivas nacionales sobre seguridad en el trabajo y aseguramiento de la calidad.
  • Protección contra infecciones:
  • El usuario debe considerar el uso de equipamiento de protección personal eficaz contra infecciones de acuerdo con las directivas de trabajo en laboratorio.

Indicaciones para la eliminación de residuos

  • El envase debe ser eliminado de acuerdo con las directivas válidas de eliminación de residuos.
  • Las soluciones usadas y las soluciones caducas deben eliminarse como desecho peligroso, debiéndose cumplir las directivas locales de eliminación de residuos.
  • Clasificación de sustancias peligrosas:
  • Tener en cuenta la clasificación de substancias peligrosas en la etiqueta del producto y las indicaciones en la ficha de datos de seguridad. La ficha de seguridad está disponible en el sitio web https://www.stanton.com.ar/
  • Todos nuestros productos cuentan con su correspondiente ficha técnica y de seguridad, disponibles en forma on line:  https://www.stanton.com.ar/index.html

Bibliografia:

  1. Routine Cytological Staining Techniques: Theoretical Background and Practice. Author(s): Mathilde E. Boon, Johanna S. Drijver (auth.). Publisher: Macmillan Education UK, Year: 1986
  2. Métodos Histotecnológicos. Instituto de patología de las Fuerzas Armadas de los EEUU (AFIP). ed. (1992).
  3. Raimundo García del Moral, “Laboratorio de Anatomía Patológica”

Indicación al consumidor:

  • El producto está garantizado por el fabricante hasta su fecha de vencimiento si se lo transporta y almacena en las condiciones prescriptas.
  • Ante cualquier consulta, el fabricante puede ser contactado personalmente, por email o por teléfono o ingresando en www.stanton.ar  solapa de contacto.

USOS ANALITICOS

  • Aplicable en cortes histológicos o en frotis de sangre y medula osea. Destinada para a la tincion de linfocitos, mucopolisacaridos y hongos.
  • Tincion intesa y definida de color ROJO PURPURA